饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、抗氧化和抗低氧胁

ｄｏｉ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１００６⁃２６７ｘ．２０２０．０１．０４０

饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、

抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响

（１．广东省农业科学院动物科学研究所，广州５１０６４０；２．广东省畜禽育种与营养研究重点实验室，广州５１０６４０；３．农业部华南动物营养与饲料重点实验室，广州５１０６４０；４．广州飞禧特生物科技有限公司，广州５１０６４０）

∗

彭　凯１，２，３　孙育平１，２，３∗　王国霞１，２，３　黄燕华１，２，３，４∗　莫文艳１，２，３　萧鸿发１，２，３

摘　要：本试验旨在研究饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响。选择初体重为（１０．１４±０．１２）ｇ的健康花鲈５２５尾，随机分为５组，每组３个重复，每个重复３５尾。分别投喂Ｔ１（对照组，含２８％鱼粉，不添加啤酒酵母提取物）、Ｔ２（含２５％鱼粉，不添加啤酒酵母提取物）、Ｔ３（在Ｔ２基础上添加０．１％啤酒酵母提取物）、Ｔ４（在Ｔ２基础上添加０．２％啤酒酵母提取物）和Ｔ５（在Ｔ２基础上添加０．３％啤酒酵母提取物）５种等氮等脂饲料，试验周期为５６ｄ。结果表明：１）Ｔ２组花鲈摄食量显著低于Ｔ１组（Ｐ＜０．０５），但与Ｔ３～Ｔ５组无显著差异（Ｐ＞０．０５）；Ｔ１及Ｔ３～Ｔ５组花鲈末体重有高于Ｔ２组的趋势（０．０５＜Ｐ＜０．１０）；各组间花鲈形体指标、体成分无显著差异（Ｐ＞０．０５）。２）各组间花鲈血清生化指标无显著差异（Ｐ＞０．０５）；随着啤酒酵母提取物添加量升高，花鲈血清过氧化氢酶活性显著增加，丙二醛和白细胞介素－６含量降低，Ｔ５组血清过氧化氢酶活性显著高于Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），Ｔ３～Ｔ５组血清丙二醛和白细胞介素－６含量显著低于Ｔ２组（Ｐ＜０．０５）；花鲈肝脏总抗氧化能力、过氧化氢酶活性随着啤酒酵母提取物添加量升高而增加，Ｔ４和Ｔ５组肝脏总抗氧化能力显著高于Ｔ１～Ｔ３组（Ｐ＜０．０５），Ｔ３～Ｔ５组肝脏过氧化氢酶活性显著高于Ｔ１组（Ｐ＜０．０５）。３）低氧胁迫６ｈ后，Ｔ３～Ｔ５组花鲈累计死亡率显著低于Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），Ｔ４和Ｔ５组血清过氧化氢酶活性显著高于Ｔ１～Ｔ３组（Ｐ＜０．０５），血清丙二醛含量显著低于Ｔ１和Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），Ｔ４和Ｔ５组肝脏超氧化物歧化酶活性显著高于Ｔ１和Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），Ｔ３～Ｔ５组肝脏丙二醛含量显著低于Ｔ１和Ｔ２组（Ｐ＜０．０５）。综上所述，饲料中添加０．１％～０．３％的啤酒酵母提取物可提高花鲈幼鱼生长性能，改善抗氧化状态，并提高抗低氧胁迫能力。

关键词：啤酒酵母提取物；花鲈；抗氧化；低氧胁迫

中图分类号：Ｓ９６３　　　　文献标识码：Ａ　　　　文章编号：１００６⁃２６７Ｘ（２０２０）０１⁃０３３４⁃１２　　随着规模化和集约化养殖的迅猛发展，水产品质量和安全相比产量显得更为重要。水产动物所面临的人为活动、自然环境变化、饲料及水体中各种应激因子日益增加，从而造成氧化应激。氧化应激是众多疾病发生的重要病理原因之一。氧

收稿日期：２０１９－０６－１９

基金项目：广东省海洋和渔业发展专项（水产饲料添加剂ＧＳＨ新产品研制及其护肝关键技术应用示范）；广东省现代农业产业技术推广体系建设项目（２０１８ＬＭ１０８２，２０１８ＬＭ１０８３）

作者简介：彭　凯（１９８７—），男，河南信阳人，助理研究员，博士，从事水产动物营养与饲料资源开发研究。Ｅ⁃ｍａｉｌ：ｐｅｎｇｋａｉ１０１６＠１２６．ｃｏｍ∗同等贡献作者

∗∗通信作者：黄燕华，研究员，硕士生导师，Ｅ⁃ｍａｉｌ：ｈｕａｎｇｙｈ１１１＠１２６．ｃｏｍ

化应激状态下，机体组织和细胞内氧自由基生成增加，导致活性氧累积而引发细胞氧化损伤，使机体抗氧化和免疫力下降并引发大规模病害，影响水产动物生产性能、水产品品质和安全，同时给水产养殖业带来严重的经济损失。动物健康程度与

１期彭　凯等：饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响３３５

机体抗氧化防御体系的能力强弱密切相关［１］。

花鲈（Ｌａｔｅｏｌａｂｒａｘｊａｐｏｎｉｃｕｓ）幼鱼为试验动物，主要研究饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈生长性能、抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响，以期为酵母提取物在鱼类饲料中的合理应用提供理论依据。

　　啤酒酵母提取物是一类富含蛋白质、核苷酸、２０世纪９０年代起就用作水产饲料添加剂［２］。啤酒酵母提取物最显著的特点体现在它的促生长和抗氧化作用，通常归因于其活性成分的生物活性作用，在畜禽水产中具有广阔的应用前景

［３］

多糖、促生长因子、抗氧化活性物质的营养素，自

于酵母提取物含有丰富的蛋白质和氨基酸，以往报道多集中在酵母提取物替代鱼粉等饲料蛋白质源的研究。１．５％的啤酒酵母提取物替代血浆蛋白粉可改善断奶仔猪的生长性能，降低仔猪腹泻率并促进肠绒毛发育［４］。啤酒酵母提取物替代鱼粉不影响凡纳滨对虾的生长性能，但可提高对虾营养物质消化率，增强血清溶菌酶活性量，改善蟹肉风味

［５］

［３］

。由

１　材料与方法

１．１　试验饲料

　　试验共配制５组等氮等脂饲料，其组成及营养水平见表１。以鱼粉、豆粕、菜籽粕和花生麸为蛋白质源，高精面粉为糖源，豆油和鱼油为脂肪源配制鱼粉含量为２８％的饲料Ｔ１。在Ｔ１基础上，通过降低鱼粉用量，配制鱼粉含量为２５％的饲料Ｔ２。在Ｔ２基础上，分别向饲料中添加０．１％（Ｔ３）、０．２％（Ｔ４）和０．３％（Ｔ５）的啤酒酵母提取物。啤酒酵母提取物由山东金城生物药业有限公司提供，主要由氨基酸、还原型谷胱甘肽和核苷酸组成，其粗蛋白质含量为５８．２％、水分含量为３．８％、粗灰分含量为１５．３％、谷胱甘肽含量为１５．５％、总核苷酸含量为０．５％、总糖含量为０．５％。全部饲料原料均过６０目筛网，维生素和矿物质预混料等微量组分采用逐级扩大法混匀，全部饲料混合均匀后用ＳＬＸ－８０型双螺杆挤压机（华南理工大学科技实业有限公司）制成直径为２．０ｍｍ的颗粒饲料，５５℃烘干后冷却至室温，饲料过２０目筛网并装入密封袋中，于－２０℃冰箱中保存备用。

取物替代鱼粉还能增加河蟹呈味游离氨基酸含效果，还能刺激机体和细胞抗氧化系统，增强动物健康。饲料中添加０．０１％啤酒酵母提取物显著增加草鱼血清中谷胱甘肽过氧化物酶和超氧化物歧化酶活性［６］。啤酒酵母提取物对梭鲈（Ｓａｎｄｅｒｌｕ⁃ｃｉｏｐｅｒｃａＬ．）幼鱼和绵羊均具有较强的免疫刺激作用［７－８］，其不仅激活机体体液和细胞免疫系统，且无任何毒副作用。尽管酵母提取物的生物活性已被人们所认知，但其作用机理仍不完全清楚，尤其对于水产动物的抗氧化作用以及酵母提取物的抗应激能力仍然缺乏进一步研究。因此，本试验以

。酵母提取物不仅具有诱食

。酵母提

表１　试验饲料组成及营养水平（干物质基础）

Ｔａｂｌｅ１　Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎａｎｄｎｕｔｒｉｅｎｔｌｅｖｅｌｓｏｆｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｄｉｅｔｓ（ＤＭｂａｓｉｓ）

项目Ｉｔｅｍｓ

原料Ｉｎｇｒｅｄｉｅｎｔｓ鱼粉Ｆｉｓｈｍｅａｌ豆粕Ｓｏｙｂｅａｎｍｅａｌ菜籽粕Ｒａｐｅｓｅｅｄｍｅａｌ花生麸Ｐｅａｎｕｔｍｅａｌ高精面粉Ｈｉｇｈｇｌｕｔｅｎ磷酸二氢钙Ｃａ（Ｈ２ＰＯ４）２鱼油Ｆｉｓｈｏｉｌ豆油Ｓｏｙｂｅａｎｏｉｌ大豆卵磷脂Ｓｏｙｌｅｃｉｔｈｉｎ维生素预混料Ｖｉｔａｍｉｎｐｒｅｍｉｘ１）矿物质预混料Ｍｉｎｅｒａｌｐｒｅｍｉｘ２）

２８．００１３．００１０．００１１．００２５．００１．５０３．００２．００２．０００．１００．５０

２５．００１８．００１０．００１１．００２５．００１．５０３．００２．００２．０００．１００．５０

２５．００１８．００１０．００１１．００２５．００１．５０３．００２．００２．０００．１００．５０

２５．００１８．００１０．００１１．００２５．００１．５０３．００２．００２．０００．１００．５０

２５．００１８．００１０．００１１．００２５．００１．５０３．００２．００２．０００．１００．５０

Ｔ１

Ｔ２

饲料ＤｉｅｔｓＴ３

Ｔ４

Ｔ５

％

３３６

续表１

动　物　营　养　学　报３２卷

项目Ｉｔｅｍｓ

氯化胆碱Ｃｈｏｌｉｎｅｃｈｌｏｒｉｄｅ

维生素Ｃ磷酸酯ＶｉｔａｍｉｎＣｐｈｏｓｐｈａｔｅｅｓｔｅｒ赖氨酸Ｌｙｓｉｎｅ蛋氨酸Ｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ甜菜碱Ｂｅｔａｉｎｅ微晶纤维素粉Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ

啤酒酵母提取物Ｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ合计Ｔｏｔａｌ

营养水平Ｎｕｔｒｉｅｎｔｌｅｖｅｌｓ３）粗蛋白质Ｃｒｕｄｅｐｒｏｔｅｉｎ粗脂肪Ｅｔｈｅｒｅｘｔｒａｃｔ水分Ｍｏｉｓｔｕｒｅ粗灰分Ａｓｈ

总能Ｇｒｏｓｓｅｎｅｒｇｙ／（ＭＪ／ｋｇ）

１００．００３９．４１１０．０１８．６０５．８０１９．３８

１００．００３９．３７１０．０１８．６７５．７５１９．３０

Ｔ１０．５００．１４０．０３０．２２０．５０２．５１

Ｔ２０．５００．１４０．０５０．２８０．５００．４３

饲料Ｄｉｅｔｓ

Ｔ３０．５００．１４０．０５０．２８０．５００．３３０．１０１００．００３９．４５１０．１１８．６３５．７２１９．３１

Ｔ４０．５００．１４０．０５０．２８０．５００．２３０．２０１００．００３９．４１１０．０８８．６６５．７１１９．３７

Ｔ５０．５００．１４０．０５０．２８０．５００．１３０．３０１００．００３９．４０１０．０５８．５７５．７２１９．３５

　　１）每千克维生素预混料中含有Ｏｎｅｋｉｌｏｇｒａｍｏｆｖｉｔａｍｉｎｐｒｅｍｉｘｃｏｎｔａｉｎｅｄｔｈｅｆｏｌｌｏｗｉｎｇ：ＶＡ３２３００００ＩＵ，ＶＢ１４ｇ，ＶＢ２８ｇ，ＶＢ６４．８ｇ，ＶＢ１２０．０１６ｇ，ＶＤ１６０００００ＩＵ，ＶＥ１６ｇ，ＶＫ４ｇ，烟酸ｎｉｃｏｔｉｎｉｃａｃｉｄ２８ｇ，泛酸钙ｃａｌｃｉｕｍｐａｎｔｏｔｈｅｎａｔｅ１６ｇ，叶酸ｆｏｌｉｃａｃｉｄ１．２８ｇ，肌醇ｉｎｏｓｉｔｏｌ４０ｇ，生物素ｂｉｏｔｉｎ０．０６４ｇ。

　　２）每千克矿物质预混料中含有Ｏｎｅｋｉｌｏｇｒａｍｏｆｍｉｎｅｒａｌｐｒｅｍｉｘｃｏｎｔａｉｎｅｄｔｈｅｆｏｌｌｏｗｉｎｇ：ＭｇＳＯ４·Ｈ２Ｏ１２ｇ，Ｃａ（ＩＯ３）２　　３）营养水平为实测值。Ｎｕｔｒｉｅｎｔｌｅｖｅｌｓｗｅｒｅｍｅａｓｕｒｅｄｖａｌｕｅｓ．

９ｇ，ＫＣｌ３６ｇ，Ｍｅｔ⁃Ｃｕ１．５ｇ，ＺｎＳＯ４·Ｈ２Ｏ１０ｇ，ＦｅＳＯ４·Ｈ２Ｏ１ｇ，Ｍｅｔ⁃Ｃｏ０．２５ｇ，ＮａＳｅＯ３０．００３６ｇ。

１．２　试验设计与饲养管理

　　试验所用花鲈鱼苗购于福建诏安县英港育苗场，饲养试验在广东省农业科学院动物科学研究所室内循环水养殖系统中进行。养殖系统由１５个圆柱形玻璃纤维桶（直径８０ｃｍ、高７０ｃｍ、容积３５０Ｌ）组成，实际养殖水容量为３００Ｌ，进水速率为１．５Ｌ／ｍｉｎ。鱼苗先于室外水泥暂养池中暂养，每天投喂２次（０８：００和１８：００）肉鱼商品饲料（４０％粗蛋白质、１０％粗脂肪）。试验开始前，花鲈鱼苗禁食１２ｈ，随后选取体格健壮、大小均匀、平均初始体重为（１０．１４±０．１２）ｇ的花鲈幼鱼５２５尾，随机分为５组，每组３个重复，每个重复３５尾，分别投喂５种试验饲料。每日记录投喂量、死亡情况、水温和水质情况。分别于每天０８：００和１８：００各投喂１次，投喂量为鱼体重的４％～６％，饲养周期为５６ｄ。试验期间水温为（２７．４±２．４）℃，ｐＨ７．５～８．０，氨氮含量≤０．０２ｍｇ／Ｌ，亚盐含１．３　样品采集与分析

量≤０．０１ｍｇ／Ｌ，溶氧含量＞５．０ｍｇ／Ｌ。

　　试验结束前１２ｈ禁食，随后统计每桶花鲈的数量和总重量，计算末体重和增重率。每桶随机

取１２尾鱼，用４０ｍｇ／Ｌ的间氨基苯甲酸乙酯甲磺酸盐（ＭＳ－２２２）麻醉，称重后测体长。采用１ｍＬ无菌注射器（预先用１ｍｇ／ｍＬ肝素钠润洗）于尾静脉取血，室温下静置２ｈ，离心制备血清（３５００ｒ／ｍｉｎ，１０ｍｉｎ），置于－８０℃保存，用于血清生化指标测定。每桶随机取６尾鱼解剖，剥离内脏团，分离肝脏、肠道、腹腔脂肪后称重，计算脏体比、肝体比和腹腔脂肪率。每桶随机取３尾鱼解剖，取肝脏于冷冻管中，置于－８０℃保存，用于肝脏抗氧化酶活性测定。每桶随机取３尾鱼，称重后置于６５℃烘干，用于全鱼体组成分析。　　养殖试验结束后，每桶随机选取１５尾鱼进行低氧胁迫试验，方法参照Ｚｅｎｇ等［９］并做适当调整。低氧胁迫开始前，将循环水关闭，每桶中水量由３００Ｌ下调至５０Ｌ，水面距离桶底约１０ｃｍ，将１层透明的悬浮薄膜覆盖在水面上，防止空气和水体中氧气交换。试验期间使用便携式溶氧仪（Ｓｅｖｅｎ２Ｇｏ，ＭｅｔｔｌｅｒＴｏｌｅｄｏ，美国）每隔３０ｍｉｎ监测１次水体溶氧量。当水体溶氧量由初始值６．５ｍｇ／Ｌ下降至１．０ｍｇ／Ｌ时，记录每桶试验起始时间以及鱼的死亡情况。当对照组（未添加啤酒

１期彭　凯等：饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响３３７

酵母提取物）中鱼的死亡率达到５０％时，终止低氧胁迫试验。每桶随机取３尾活鱼，分别取血清和肝脏，置于－８０℃保存，用于抗氧化酶活性指标测定。

　　饲料和全鱼样品中的水分含量采用１０５℃常压干燥法（ＧＢ／Ｔ６４３５—１９８６）、粗蛋白质含量采用凯氏定氮法（ＧＢ／Ｔ６４３２—１９９４）、粗脂肪含量采用乙醚抽提法（ＧＢ／Ｔ６４３２—１９９４）、粗灰分含量采用５５０℃灼烧法（ＧＢ／Ｔ６４３８—１９９２）。饲料１００×肝脏重（ｇ）／体重（ｇ）；

肠体比（ＩＳＩ，％）＝１００×肠重（ｇ）／体重（ｇ）；腹脂率（ＩＰＦ，％）＝

１００×腹腔脂肪重（ｇ）／体重（ｇ）；

饲料系数＝摄食饲料

总量（ｇ）／［末体重（ｇ）－

初体重（ｇ）］；

蛋白质效率（％）＝

总能采用氧弹量热仪（ＩＫＡ－Ｃ２０００，德国）进行测定（（ＧＬＵ。血清胆固醇）、尿素氮（（ＣＨＯＵＮ））、、白甘油三酯蛋白（ＡＬＢ（ＴＧ））、、球葡萄糖脂蛋ＧＬＢ（白）、胆高密度脂蛋白胆固醇固醇（ＬＤＬ⁃Ｃ）含（ＨＤＬ⁃Ｃ）和低密度蛋白分析仪ＡＳＴ）量及谷草转氨酶（、谷丙转氨酶日立７６００，日本（ＡＬＴ）进行测定）活性采用全自动生化。血清和肝脏的总抗氧化能力（（ＧＳＨ⁃ＰｘＣＡＴ）、碱性磷酸酶）、超氧化物歧化酶（Ｔ⁃ＡＯＣ）、谷胱甘肽过氧化物酶（ＡＫＰ）、（一氧化氮酶ＳＯＤ）、过氧化氢酶溶菌酶（ＬＺＭ）活性及丙二醛（ＭＤＡ）、抗超氧阴离（ＮＯＳ）、

子自由基（Ａｎｔｉ⁃Ｏ－２建成生物工程研究所·））含量采用商业试剂盒并依照试剂盒说明书进行（南京测定。血清免疫球蛋白Ｍ（ＩｇＭ）、肿瘤坏死因子－α（ＴＮＦ⁃α）、白细胞介素－６（ＩＬ⁃６）和白细胞介素－８（ＩＬ⁃８）含量使用酶联免疫吸附试验（ＥＬＩＳＡ）商业试剂盒（Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ，Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，Ｍｉｎｎｅｓｏ⁃ｔａ，美国）并依照试剂盒说明书进行测定。

１．４　指标计算

［末体重（ｇ增重率）－初体重（％）（＝ｇ）１００］／×

［ｌｎ摄食量末体重特定生长率初体重（ｇ）；（ｇ）－ｌｎ初体重（％／ｄ（）ｇ＝）１００］×

存活率［（（初始尾数（ｇ／尾）＝／饲养天数；

％）＝１００＋摄食饲料总量×终末尾数终末尾数）／初始尾数／２］（；

ｇ）／；

肥满度（ｇ／ｃｍ３１００×体重（ｇ）／体长）（＝

ｃｍ）３脏体比（ＶＳＩ，％）＝；

１００×内脏重（ｇ）／体重（ｇ）；

肝体比（ＨＳＩ，％）＝

１００×［末体重（ｇ）－初体重（ｇ）］／［摄入饲料１．５　数据统计与分析

总量（ｇ）×饲料粗蛋白质含量（％）］。

　（法对试验结果的差异显著性进行分析处理ｏｎｅ⁃ｗａｙ　采用ＳＰＳＳＡＮＯＶＡ１７．０）和统计软件中单因素方差分析Ｄｕｎｃａｎ氏法均值多重比较，若不满足方差齐性则采用Ｄｕｎｎｅｔｔ⁃Ｔ３检验法进行多重比较。试验数据用平均值±标准误（ｍｅａｎ±ＳＥ）表示，Ｐ＜０．０５表示差异显著。

２　２．１　结啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能的影响　果

　（差异Ｐ　＜０．０５由表（Ｐ＞０．０５）２，Ｔ３可知）～，Ｔ２组花鲈摄食量显著低于Ｔ１组。Ｔ５各组间末体重组花鲈摄食量与、增重率Ｔ１、组无显著特定生长率、成活率、饲料系数、蛋白质效率、肥满度、脏体比、肝体比、肠体比和腹脂率无显著差异（Ｐ＞０．０５）。

２．２　啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼体组成的影响　　由表３可知，各组间全鱼水分、粗蛋白质、粗２．３脂肪和粗灰分含量均无显著差异　啤酒酵母提取物对花鲈（幼Ｐ鱼＞０．０５血清）。生化、抗氧化和非特异性免疫指标的影响

　　由表４可知，各组间花鲈血清生化指标无显著差异（Ｐ＞０．０５）。随着啤酒酵母提取物添加量升高，花鲈血清过氧化氢酶活性增加，丙二醛和白细胞介素－６含量降低，Ｔ５组血清过氧化氢酶活性显著高于Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），Ｔ３～Ｔ５组血清丙二醛和白细胞介素－６含量均显著低于Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），其他血清抗氧化和非特异性免疫指标各组间无显著差异（Ｐ＞０．０５）。

３３８

动　物　营　养　学　报

表２　啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能的影响

Ｔａｂｌｅ２　Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｏｎｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅＪａｐａｎｅｓｅｓｅａｂａｓｓ

３２卷

项目Ｉｔｅｍｓ

摄食量ＦＩ／（ｇ／尾）末体重ＦＢＷ／ｇ增重率ＷＧＲ／％特定生长率ＳＧＲ／（％／ｄ）成活率ＳＲ／％饲料系数ＦＣ蛋白质效率ＰＥＲ／％

３

组别Ｇｒｏｕｐｓ

Ｔ１１０．８１±０．２８ａ４６．５０±０．４１３５８．６２±４．０２２．７７±０．０５９５．５９±１．４７１．２５±０．０１１８９．６５±１．５３１０．４８±０．１２０．７９±０．０１０．７２±０．０４５．７５±０．４０１．７３±０．０６

Ｔ２９．５６±０．０８ｂ４０．６７±２．１６２９９．０９±２１．２８２．４７±０．１０９７．０９±１．７０１．３２±０．０３１８２．２８±４．４０１０．６６±０．２７０．８０±０．０２０．７４±０．０６６．２６±０．３０１．７４±０．０１

Ｔ３１０．１８±０．３４ａｂ４６．１６±１．４１３５５．２６±１３．９４２．７０±０．０６９７．１４±２．８６１．２７±０．０３１８６．７０±３．８６１０．６５±０．６００．７７±０．０４０．６８±０．０１６．２２±０．４８１．７８±０．０４

Ｔ４１０．１６±０．２４ａｂ４５．６０±２．２５３４９．６８±２２．２３２．６８±０．０９９５．４５±１．５２１．２８±０．０４１８６．６２±４．３４１．７１±０．０２９．９５±０．３５０．８５±０．０３０．７６±０．０７５．６４±０．２１

Ｔ５１０．１０±０．２８ａｂ４２．７０±２．５４３０８．３２±１９．３２２．５１±０．０８９４．０８±１．７３１．３３±０．０１１７７．００±１．７４１０．２５±０．２００．８３±０．０６０．７０±０．０１５．８０±０．２１１．７５±０．０２

肥满度ＣＦ／（ｇ／ｃｍ）脏体比ＶＳＩ／％肝体比ＨＳＩ／％肠体比ＩＳＩ／％腹脂率ＩＰＦ／％

　　同行数据肩标不同小写字母表示差异显著（Ｐ＜０．０５）。下表同。

　　Ｖａｌｕｅｓｉｎｔｈｅｓａｍｅｒｏｗｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｓｍａｌｌｌｅｔｔｅｒｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔｓｍｅａｎｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（Ｐ＜０．０５）．Ｔｈｅｓａｍｅａｓｂｅｌｏｗ．

表３　啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼体组成的影响（湿重基础）Ｔａｂｌｅ３　Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｏｎｂｏｄｙｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅ

Ｊａｐａｎｅｓｅｓｅａｂａｓｓ（ｗｅｔｗｅｉｇｈｔｂａｓｉｓ）

项目Ｉｔｅｍｓ水分Ｍｏｉｓｔｕｒｅ

粗蛋白质Ｃｒｕｄｅｐｒｏｔｅｉｎ粗脂肪Ｅｔｈｅｒｅｘｔｒａｃｔ粗灰分Ａｓｈ

Ｔ１６７．７２±０．５１１６．３９±０．２５７．６６±０．８１８．０５±１．４３

Ｔ２６７．４６±０．２１１６．４０±０．２２７．２７±０．３０７．７５±０．９３

组别Ｇｒｏｕｐｓ

Ｔ３６８．２２±０．３６１６．７４±０．１２６．７１±０．３７８．８４±０．８４

Ｔ４６８．５６±０．３０１６．７１±０．１０６．８６±０．１７８．７８±１．０８

Ｔ５６７．３２±０．２２１６．５０±０．０４７．２６±０．２６７．８２±０．８６

％

表４　啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼血清生化、抗氧化和非特异性免疫指标的影响Ｔａｂｌｅ４　Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｏｎｓｅｒｕｍｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ，ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔａｎｄｎｏｎ⁃ｓｐｅｃｉｆｉｃ

ｉｍｍｕｎｅｉｎｄｉｃｅｓｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅＪａｐａｎｅｓｅｓｅａｂａｓｓ

项目Ｉｔｅｍｓ

生化指标Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｉｎｄｉｃｅｓ白蛋白ＡＬＢ／（ｇ／Ｌ）球蛋白ＧＬＯＢ／（ｇ／Ｌ）胆固醇ＣＨＯ／（ｍｍｏｌ／Ｌ）甘油三酯ＴＧ／（ｍｍｏｌ／Ｌ）谷丙转氨酶ＡＬＴ／（Ｕ／Ｌ）谷草转氨酶ＡＳＴ／（Ｕ／Ｌ）低密度脂蛋白胆固醇ＬＤＬ⁃Ｃ／（ｍｍｏｌ／Ｌ）高密度脂蛋白胆固醇ＨＤＬ⁃Ｃ／（ｍｍｏｌ／Ｌ）

１５．７０±０．２６２４．５７±０．５８３．７６±０．０９４．５１±０．１５４．５０±０．５０６３．３３±３．２８０．１５±０．０１１．２０±０．０４

１６．２３±０．７０２４．５０±０．５８３．６１±０．０６４．２７±０．１６５．６７±０．６７６８．３３±７．１２０．１４±０．０１１．１２±０．０４

１５．０３±０．３３２３．５３±０．６１３．４１±０．０２４．０４±０．０９４．６７±０．８８６８．００±７．０００．１２±０．０１１．０６±０．０３

１５．３７±０．３５２４．４０±０．２６３．４９±０．１２４．１１±０．０８４．５０±０．５０６８．５０±７．５００．１２±０．０１１．１７±０．０４

１５．５０±０．８７２３．２３±０．２０３．５２±０．１８３．９６±０．２３５．００±１．１５７０．３３±９．４００．１１±０．０１１．０３±０．０９

组别Ｇｒｏｕｐｓ

Ｔ１

Ｔ２

Ｔ３

Ｔ４

Ｔ５

１期续表４项目Ｉｔｅｍｓ

彭　凯等：饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响３３９

组别Ｇｒｏｕｐｓ

Ｔ１２．３３±０．０７６．７４±１．０８２．６０±０．２３１１３．９３±１．２７２．７７±０．２０２４３．７６±６．４９２２．０９±１．４７ａ１９２．６０±１．７３

ａｂ

Ｔ２２．６０±０．１２７．８３±０．４７２．８０±０．１２１１３．２６±３．５１２．３２±０．１５２２７．７９±７．５６２１．１９±０．９９ａ１９６．５５±０．８４

ｂ

Ｔ３２．５３±０．１３６．１６±０．５４２．６４±０．２６１１７．１０±１．２７２．４５±０．１７２４３．９４±５．４０１４．４６±１．３７ｂ１９６．５６±１．８２

ｂ

Ｔ４２．４０±０．１２６．５１±０．２４３．０１±０．１０１１２．６４±３．７３２．６１±０．３８２４４．７５±７．１３１０．５８±０．３９ｃ１９２．７２±１．８５

ａｂ

Ｔ５２．５３±０．０７６．５１±０．９４２．５８±０．２６１１７．１８±３．５０３．３６±０．０７ａ２５３．５８±７．３８１１．５６±１．０９ｃ１９３．８１±１．５９

尿素氮ＵＮ／（ｍｍｏｌ／Ｌ）葡萄糖ＧＬＵ／（ｍｍｏｌ／Ｌ）抗氧化指标Ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｉｎｄｉｃｅｓ总抗氧化能力Ｔ⁃ＡＯＣ／（Ｕ／ｍＬ）超氧化物歧化酶ＳＯＤ／（Ｕ／ｍＬ）过氧化氢酶ＣＡＴ／（Ｕ／ｍＬ）谷胱甘肽过氧化物酶ＧＳＨ⁃Ｐｘ／（Ｕ／ｍＬ）丙二醛ＭＤＡ／（ｎｍｏｌ／ｍＬ）抗超氧阴离子自由基Ａｎｔｉ⁃Ｏ－２·／（Ｕ／ｍＬ）碱性磷酸酶ＡＫＰ／（Ｕ／Ｌ）溶菌酶ＬＺＭ／（Ｕ／ｍＬ）一氧化氮合酶ＮＯＳ／（Ｕ／ｍＬ）

非特异性免疫指标Ｎｏｎ⁃ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｍｍｕｎｅｉｎｄｉｃｅｓ

６５．９１±０．９８３７６．１２±１２．５７８．８８±０．６２

６４．００±１．３０３７６．０４±５．９８８．３３±０．２７２．３１±０．３０１２４．０８±１．２０ａｂ

１１７．１６±８．１１

６２．１９±１．１５３８９．６１±１２．９１８．６９±０．６４２．５４±０．１３１１３．６２±５．００ｂｃ１０８．８２±３．９４

６２．１４±１．１２３８７．３３±６．２８８．６２±０．２０２．３９±０．０５１０２．５１±２．３６ｃ１１４．２９±４．３１

６３．２８±２．８９３８５．６９±８．２３９．６４±０．５０２．４１±０．２０１０６０．７７±２０．２３１０７．４８±５．１５ｃ１１９．２１±４．８９

免疫球蛋白ＭＩｇＭ／（ｍｇ／ｍＬ）２．１５±０．１１肿瘤坏死因子－αＴＮＦ⁃α／（ｎｇ／Ｌ）１０２４．７５±２７．９１白细胞介素－６ＩＬ⁃６／（ｎｇ／Ｌ）１３０．１７±４．８９ａ白细胞介素－８ＩＬ⁃８／（ｎｇ／Ｌ）１１４．９２±１０．３６

１１３０．６６±３８．１４１０８９．１６±１２．８４１０８３．５４±２９．５４

２．４　啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼肝脏抗氧化指标的影响

　　由表５可知，随着啤酒酵母提取物添加量升高，花鲈肝脏总抗氧化能力和过氧化氢酶活性增

加，Ｔ４和Ｔ５组肝脏总抗氧化能力均显著高于Ｔ１～Ｔ３组（Ｐ＜０．０５），Ｔ３～Ｔ５组肝脏过氧化氢酶活性显著高于Ｔ１组（Ｐ＜０．０５），其他肝脏抗氧化指标各组间无显著差异（Ｐ＞０．０５）。

表５　啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼肝脏抗氧化指标的影响

Ｔａｂｌｅ５　Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｏｎｈｅｐａｔｉｃａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｉｎｄｉｃｅｓｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅＪａｐａｎｅｓｅｓｅａｂａｓｓ

项目Ｉｔｅｍｓ

总抗氧化能力

Ｔ⁃ＡＯＣ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）超氧化物歧化酶ＳＯＤ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）过氧化氢酶

ＣＡＴ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）谷胱甘肽过氧化物酶ＧＳＨ⁃Ｐｘ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）丙二醛

ＭＤＡ／（ｎｍｏｌ／ｍｇｐｒｏｔ）抗超氧阴离子自由基Ａｎｔｉ⁃Ｏ－２·／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）

组别Ｇｒｏｕｐｓ

Ｔ１０．３１±０．０２ｂ１１．４４±０．４０２３．５２±０．６２ｂ３０．８０±０．５０１．０３±０．０４１５．４６±０．５４

Ｔ２０．２９±０．０２ｂ１０．９８±０．２２２６．２９±１．７２ａｂ２８．４５±１．６４０．８８±０．０７１４．８５±０．３８

Ｔ３０．２８±０．０１ｂ１１．４０±０．３８２７．５３±０．８５ａ２９．４０±１．８４０．８８±０．０５１５．３２±０．５９

Ｔ４０．３８±０．０２ａ１１．４３±０．６４２７．５５±０．７４ａ２９．８１±１．５３１．０３±０．０６１５．２７±１．０７

Ｔ５０．４２±０．０２ａ１１．４４±０．３６２９．２４±１．２３ａ３２．２２±０．９００．９７±０．０８１４．６５±０．３５

３４０

动　物　营　养　学　报３２卷

２．５　啤酒酵母提取物对低氧胁迫花鲈幼鱼累计死亡率、血清和肝脏抗氧化指标的影响

　　由图１可知，各组间３ｈ低氧胁迫花鲈累计死亡率均为０。６ｈ低氧胁迫，随着啤酒酵母提取物添加量升高，花鲈累计死亡率逐渐下降，Ｔ３～Ｔ５组累计死亡率显著低于Ｔ２组（Ｐ＜０．０５）。由表６可知，Ｔ４和Ｔ５组血清过氧化氢酶活性显著高于Ｔ１～Ｔ３组（Ｐ＜０．０５），血清丙二醛含量显著低于Ｔ１和Ｔ２组（Ｐ＜０．０５）。Ｔ４和Ｔ５组肝脏超氧化物歧化善饲料蛋白质等营养素的利用率［３］。酵母源物质也被报道对凡纳滨对虾、草鱼、斑点叉尾鮰、加州本试验选用的啤酒酵母提取物含有谷胱甘肽与核苷酸活性成分，花鲈生长性能的提高可能与二者的促生长作用密切相关。饲料中添加谷胱甘肽可提高鲈鱼幼鱼（Ｄｉｃｅｎｔｒａｒｃｈｕｓｌａｂｒａｘ）的生长性归因于谷胱甘肽能够破坏细胞生长抑素分子的二能［１３］。谷胱甘肽可促进鱼类摄食，提高生长速度，鲈、大菱鲆等水产动物具有促生长作用［３，６，１０－１２］。

酶活性显著高于Ｔ１和Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），Ｔ３～Ｔ５组肝脏丙二醛含量显著低于Ｔ１和Ｔ２组（Ｐ＜０．０５），其他血（Ｐ＞０．０５清）和。

肝脏抗氧化指标各组间无显著差异　　数据柱形标注不同字母表示差异显著（Ｐ＜０．０５）。　　Ｖａｌｕｅｃｏｌｕｍｎｓｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｅｔｔｅｒｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔｓｍｅａｎｓｉｇ⁃ｎｉｆｉｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（Ｐ＜０．０５）．

图１　啤酒酵母提取物对低氧胁迫花鲈幼鱼累计死亡率的影响

Ｆｉｇ．１　Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｏｎｃｕｍｕｌａｔｉｖｅ

ｍｏｒｔａｌｉｔｙｒａｔｅｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅＪａｐａｎｅｓｅｓｅａｂａｓｓ

ｓｕｆｆｅｒｅｄｈｙｐｏｘｉｃｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ

３　３．１　讨啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能的影响　论

　　本试验结果表明，饲料中鱼粉添加量由２８％下降到２５％时，花鲈幼鱼摄食量、末体重和增重率均下降，但啤酒酵母提取物的添加可弥补低鱼粉饲料花鲈生长性能的不足，说明饲料中添加啤酒酵母提取物可增加花鲈幼鱼的生长性能，减少鱼粉的用量，这对于节省饲料成本具有重要意义。有研究表明，啤酒酵母提取物富含小肽、氨基酸、核苷酸、谷胱甘肽等生物活性物质，能够增强鱼类自身免疫力，促进摄食和营养物质的消化吸收，改

硫键、增加胰岛素样生长因子－－Ⅰ（ＩＧＦ⁃Ⅰ）含量的作用［１４１５］达水平，增。加谷胱甘肽亦能提高鱼类细胞蛋白质合成量，从而促进水ＲＮＡ产动表物生长［１６］　　有研究表明。

，核苷酸对水产动物具有显著的促生长效果，因此通常作为动物诱食剂。核苷酸与肉食性鱼虾的味觉感应密切相关［１７］报道，外源添加核苷酸可增加鱼类和甲壳类动物，已有文献的摄食量［１８－１９］物生长性能。核苷酸促生长机制可能是通过提高，促进细胞和生长，从而提高动动物摄食率、减少营养物质溶失，使饲料中更多的营养物质参与机体生长代谢过程［２０］激活细胞蛋白激酶活性，诱导体内激素和代谢酶。核苷酸亦能合成，促进蛋白质合成，达到增重的效果［２１］添加酵母核苷酸可减少花鲈饲料中４％的鱼粉用。外源量，并提高增重率［２２］也在罗非鱼［２３］［２６］中有相关报道、斑点。。叉酵母核苷酸的促生长作用本试验结果表明尾

［２４］

鱼、黄颡鱼［２５］，饲料中添、大黄

加０．１％～０．３％的啤酒酵母提取物可节省３％的鱼粉用量，并提高花鲈幼鱼的生长性能，这与王武刚［３］在凡纳滨对虾、尹子煜等［２７］在异育银鲫上的３．２试验结果相似　啤酒酵母。

提取物对花鲈幼鱼血清和肝脏抗氧化指标的影响

　　酵母提取物的抗氧化作用一般归因于自身含有的核苷酸、多糖（如β－葡聚糖、甘露寡糖）和一些活性物质。本试验所用啤酒酵母提取物主要活性物质为核苷酸和谷胱甘肽，花鲈血清抗氧化能力的升高，可能与二者作用密切相关。有研究表明，动物体内参与抗氧化的组织或细胞合成核苷酸能力有限，需要外源补充核苷酸［２８］酸化学结构中的碱性氮原子可以捕捉机体氧化过。核苷程形成的自由基，具有保护血细胞膜脂质过氧化及氧化损伤造成的红细胞破裂作用［２９］。核苷酸还１期彭　凯等：饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响３４１

具有增强巨噬细胞吞噬作用以及强化自然杀伤细谷胱甘肽能够促进机体内过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）、有机氢过氧化物和脂质氢过氧化物的还原，减轻细胞氧化损伤，清除体内过量的氧自由基［６］。饲料中添加谷胱甘肽可提高罗非鱼和对虾血清中谷胱甘肽还原酶活性［３１－３２］，增强抗氧化相关基因ｍＲＮＡ

胞活性，从而提高机体抵抗外源应激的能力［３０］。

表达［１４，３３］，从而提高机体抗氧化能力。谷胱甘肽可增强花鲈血清谷胱甘肽过氧化物酶、谷胱甘肽转移酶活性，提高花鲈血清抗氧化力［３４］。啤酒酵母提取物的抗氧化作用可能通过激活抗氧化酶活性、减少自由基等氧化因子含量的途径实现，但其作用机理有待进一步阐明。

表６　啤酒酵母提取物对低氧胁迫花鲈幼鱼血清和肝脏抗氧化指标的影响

Ｔａｂｌｅ６　Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｏｎｓｅｒｕｍａｎｄｈｅｐａｔｉｃａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｉｎｄｉｃｅｓｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅ

Ｊａｐａｎｅｓｅｓｅａｂａｓｓｓｕｆｆｅｒｅｄｈｙｐｏｘｉｃｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ

项目Ｉｔｅｍｓ

血清指标Ｓｅｒｕｍｉｎｄｉｃｅｓ总抗氧化能力Ｔ⁃ＡＯＣ／（Ｕ／ｍＬ）超氧化物歧化酶ＳＯＤ／（Ｕ／ｍＬ）过氧化氢酶ＣＡＴ／（Ｕ／ｍＬ）谷胱甘肽过氧化物酶ＧＳＨ⁃Ｐｘ／（Ｕ／ｍＬ）丙二醛ＭＤＡ／（ｎｍｏｌ／ｍＬ）抗超氧阴离子自由基Ａｎｔｉ⁃Ｏ－２·／（Ｕ／ｍＬ）肝脏指标Ｈｅｐａｔｉｃｉｎｄｉｃｅｓ总抗氧化能力

Ｔ⁃ＡＯＣ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）超氧化物歧化酶ＳＯＤ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）过氧化氢酶

ＣＡＴ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）谷胱甘肽过氧化物酶ＧＳＨ⁃Ｐｘ／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）丙二醛

ＭＤＡ／（ｎｍｏｌ／ｍｇｐｒｏｔ）抗超氧阴离子自由基Ａｎｔｉ⁃Ｏ－２·／（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ）

７．０２±１．１３２０２．７８±１．６０１４．６１±２．６９ｂ２９７．４５±１５．９５２４．１１±１．５８ａ３８４．１０±７．８３

６．２０±１．０９１９４．６３±１．４０１５．３８±１．４０ｂ２８５．５８±１０．６７２２．９４±１．０６ａ３７４．１１±１３．６６

６．８１±０．７０２０１．９６±３．７２１６．６０±１．１８ｂ２８７．２５±２０．９７２１．２７±１．０４ａｂ３７８．８４±６．２８

７．３８±０．８７２０４．０９±１．０８２０．１０±２．０４ａ２７５．８７±９．３３１７．４６±０．３１ｂ３８６．２８±７．０９

６．０８±０．３０１９９．７４±３．５３２２．７２±２．２５ａ３０５．５８±１６．６９１７．０９±１．６０ｂ３８４．４９±８．９５

组别Ｇｒｏｕｐｓ

Ｔ１

Ｔ２

Ｔ３

Ｔ４

Ｔ５

０．２８±０．０２１０．６７±０．７２ｂ２３．９６±０．９３３３．６０±１．０８２．７０±０．１７ａ１４．１９±１．９８

０．３０±０．０１１０．６０±０．７８ｂ２２．２０±１．６６３５．２５±２．６８２．７２±０．２１ａ１４．２９±１．０１

０．３０±０．０６１４．２２±１．４２ａｂ２３．３５±３．３１３４．９２±２．６３１．２９±０．０８ｂ１４．９０±２．４５

０．３０±０．０１１８．５３±２．４６ａ２３．４５±１．０５３７．１５±０．８０１．３６±０．２７ｂ１５．１８±１．３０

０．３０±０．０５１９．３５±０．６４ａ２６．３５±０．４２３５．２８±０．３９１．１９±０．０２ｂ１３．１７±０．６４

　　肝脏是鱼类最主要的氧化应激器官，由氧化应激导致的肝脏损伤通常会引起鱼体的多器官功能障碍，严重影响养殖经济效益。本试验结果表明，饲料中添加啤酒酵母提取物可提高花鲈幼鱼肝脏总抗氧化能力和过氧化氢酶活性。过氧化氢酶可以催化Ｈ２Ｏ２（存在于活体组织中的活性氧）分解而维持体内Ｈ２Ｏ２平衡，是一种重要的防御细胞过氧化损伤的抗氧化酶。花鲈肝脏总抗氧化能力的升高可能是由于过氧化氢酶活性升高的原因。啤酒酵母提取物增强鱼类肝脏过氧化氢酶活

性的机制尚不清楚，可能与啤酒酵母提取物中含有的活性物质如核苷酸、谷胱甘肽有关。饲料中添加谷胱甘肽可显著增加罗非鱼［１４］和黄颡鱼［３５］幼鱼肝脏氧化氢酶活性，归因于谷胱甘肽上调相应抗氧化酶ｍＲＮＡ表达量的结果。因此，啤酒酵母提取物增强花鲈肝脏抗氧化状态的作用可以归因于啤酒酵母提取物自身含有的核苷酸和谷胱甘３．３　啤酒酵母提取物对花鲈血清免疫指标的影响　　酵母提取物是通过水解酵母细胞得到的水溶肽的抗氧化作用。

３４２

动　物　营　养　学　报３２卷

性细胞内含物，相比于酵母粉、酵母细胞壁等物质更容易被动物消化，且含有更加丰富的氨基酸、核苷酸、免疫因子等活性物质，可作为水产动物免疫调节剂［３６］。啤酒酵母提取物可激活鲤鱼的免疫系统，上调免疫相关基因表达量，发挥其免疫刺激作用

［３７］

化应激能力。

４　结　论

　　饲料中添加０．１％～０．３％的啤酒酵母提取物可提高花鲈幼鱼的生长性能，改善血清和肝脏抗氧化状态，提高花鲈抵抗低氧胁迫的能力。参考文献：

ｃａ）

［３６］

。酵母提取物对白梭吻鲈（Ｓａｎｄｅｒｌｕｃｉｏｐｅｒ⁃、凡纳滨对虾

［３８］

等水产动物的免疫调节作

［１］　俸家富，赵平武，王东．血液中总抗氧化态与疾病的

用也有类似报道。本试验结果表明，饲料中添加啤酒酵母提取物可显著降低花鲈血清白细胞介

素－６和丙二醛含量，说明啤酒酵母提取物能够增３．４　强花鲈血清免疫能力啤酒酵母提取物对花鲈抗低氧胁迫能力的。

影响

　　缺氧是水产养殖中最重要的环境变量之一，是水产动物经常遭受的一种极端不利的养殖条件。缺氧影响动物行为和生理生化机制，容易导致机体和细胞氧化损伤［３９］

量死亡

［４０］

统来对抗氧化应激。有研究表明，如超氧化物歧化酶，鱼类主要通过激活酶系

，甚至造成水产动物大

、过氧化氢酶、谷胱甘肽酶、谷胱甘肽过氧化物酶等。抗氧化酶在水产动物抵抗低氧应激过程中发挥至关重要的作用，相关研究已在大口黑鲈、鲤鱼（Ｃｙｐｒｉｎｕｓｃａｒｐｉｏ（Ｍｉｃｒｏｐｔｅｒｕｓ）ｓａｌ⁃［４１］（ｍｏｉｄｅｓＰｅｌｔｅｏｂａｇｒｕｓ）［３９］、黄颡鱼ｒｉｏ）［４３］中进行报道ｆｕｌｖｉｄｒａｃｏ。

）［４２］、斑马鱼（Ｄａｎｉｏｒｅ⁃　　本试验结果表明，花鲈６ｈ低氧胁迫的累计死亡率随着啤酒酵母提取物添加量的增加而降低，说明饲料中添加啤酒酵母提取物可增强花鲈抗低氧胁迫的能力。低氧胁迫下，花鲈累计死亡率的下降可能归因于机体抗氧化能力的提高，反映在花鲈血清过氧化氢酶和肝脏超氧化物歧化酶活性的升高，血清和肝脏中丙二醛含量的降低。与过氧化氢酶相似，超氧化物歧化酶是生物体内重要的抗氧化酶之一，它可对抗与阻断因氧自由基对细胞造成的损害，并及时修复受损细胞，削弱自由基对细胞的伤害，消除有害物质［４４］不饱和脂肪酸过氧化的产物，直接反映了脂质过。丙二醛是多氧化水平。丙二醛的积累会导致组织损伤和致死作用

［４５］

低氧应激的作用尚无报道。目前，有关啤酒酵母提取物增强鱼类抗

，其作用机理可能通过啤酒酵母提取物中核苷酸、谷胱甘肽等活性物质激活机体抗氧化酶系统，减少自由基生成和脂质过氧化，从而发挥抗氧化作用效果，提高花鲈抗氧

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１７］　胡俊茹虾生长，、曹俊明血清生化指标和肝胰腺消化酶的影响，黄燕华，等．几种诱食剂对凡纳滨对

［Ｊ］．淡水渔业，２０１０，４０（２）：３０－３５．

１８］　ＲＵＭＳＥＹｔｉｏｎａｌｖａｌｕｅＧｏｆＬ，ｄｉｅｔａｒｙＷＩＮＦＲＥＥｎｕｃｌｅｉｃＲＡａｃｉｄｓ，ＨＵＧＨＥＳａｎｄｐｕｒｉｎｅＳＧ．Ｎｕｔｒｉ⁃

ｂａｓｅｓｔｏｒａｉｎｂｏｗｔｒｏｕｔ（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓｍｙｋｉｓｓ）［Ｊ］．Ａｑｕａ⁃ｃｕｌｔｕｒｅ，１９９２，１０８（１／２）：９７－１１０．

１９］　许丹丹纳滨对虾幼虾生长，曹俊明，黄燕华、肠道形态及抗氧化酶活力的影，等．饲料中添加核苷酸对凡

响［Ｊ］．中国水产科学，２０１１，１８（５）：１１１５－１１２４．

２０］　ＬＩｃｕｒｒｅｎｔＰ，ＧＡＴＬＩＮｋｎｏｗｌｅｄｇｅⅢａｎｄＤＭ．ｆｕｔｕｒｅＮｕｃｌｅｏｔｉｄｅａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｎｕｔｒｉｔｉｏｎ［Ｊ］ｉｎ．Ａｑｕａ⁃ｆｉｓｈ：

ｃｕｌｔｕｒｅ，２００６，２５１（２／３／４）：１４１－１５２．

２１］　曹俊明纳滨对虾幼虾生长，许丹丹，黄燕华、组织生化组成及非特异性免疫，等．饲料中添加核苷酸对凡

功能的影响［Ｊ］．水产学报，２０１１，３５（４）：５９４－６０３．

２２］　伏枥龙饲料添加四种物质对花鲈生长性能和生化指标的，曹俊明，黄燕华，等．植物蛋白部分替代鱼粉

影响［Ｃ］／／第九届世界华人鱼虾营养学术研讨会论文集．厦门：中国水产学会，２０１３．

２３］　ＲＡＭＡＤＡＮｏｇｅｎｉｃｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅＡ，ＡＴＥＦｅｎｈａｎｃｅｒＭ，ＡＦＩＦＩ（ＮＡｓｃｏｇｅｎＡ．Ｅｆｆｅｃｔ“ｏｆＳ”ｔｈｅ）ｂｉ⁃

ｏｎｇｒｏｗｔｈｒａｔｅｏｆｔｉｌａｐｉａｆｉｓｈ［Ｊ］．ＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＣｅｌｌＲｅ⁃ｓｅａｒｃｈ，１９９１，８７：３０４－３０６．

２４］　王锐生长及肠道组织发育的影响，李琴，朱惠玲，等．外源核苷酸对斑点叉尾

［Ｊ］．水产科学，２０１０，［２７］　尹子煜料中促，摄薛敏食，作郑银桦用的研，等究．酵母提取物在异育银鲫饲

［Ｊ］．饲料工业，２０１７，３８［２８］　（王广军８）：４－８．

虾生长，、朱旺明免疫以，及谭永刚抗应，激等影．酵母核苷酸对凡纳滨对

响的研究［Ｊ］．饲料工业，２００６，２７（８）：２９－３２．

［２９］　周兴华长、体组成及饲料利用影响，石芸，罗孟川，等．酵母核苷酸对锦鲤幼鱼生

［Ｊ］．粮食与饲料工业，

２００９（２）：３６－３７，４０．

［３０］　ＣＡＲＶＥＲｃｌｅｏｔｉｄｅｅｆｆｅｃｔｓＪＤ，ＣＯＸｕｐｏｎＷｍｕｒｉｎｅＩ，ＢＡＲＮＥＳＳｎａｔｕｒａｌｋｉｌｌｅｒＬＡ．Ｄｉｅｔａｒｙｃｅｌｌａｃｔｉｖｉｔｙｎｕ⁃

ａｎｄｍａｃｒｏｐｈａｇｅａｃｔｉｖａｔｉｏｎ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＰａｒｅｎｔｅｒａｌａｎｄＥｎｔｅｒａｌＮｕｔｒｉｔｉｏｎ，１９９０，１４（１）：１８－２２．

［３１］　梁春梅疫功能．的还原型谷胱甘肽对尼奥罗非鱼幼鱼生长影响及机理研究［Ｄ］．硕士学位论文、．免

广州：华南农业大学，２００６．

［３２］　刘晓华凡纳滨对虾肝胰腺抗氧化指标和脂质过氧化物含，曹俊明，吴建开，等．饲料中添加谷胱甘肽对

量的影响［Ｊ］．水产学报，３１（２）：２３５－２４０．

［３３］　刘晓华机理［Ｄ．谷胱甘肽对凡纳滨对虾抗氧化防御的

］．博士学位论文．武汉：华中农业大学，２０１０．

［３４］　李国明花鲈幼鱼生长性能，孙育平，王国霞、血清生化指标和抗氧化能力的，等．饲料中添加谷胱甘肽对

影响［Ｊ］．动物营养学报，２０１９，３１（７）：３２０７－３２１７．

［３５］　ＺＨＡＯｄｉｅｔａｒｙＨｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓＸ，ＣＡＯＪｏｎＭ，ｇｒｏｗｔｈＨＵＡＮＧ，ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌＹＨ，ｅｔａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｓｐａｒａｍｅ⁃ｏｆ

ｔｅｒｓａｎｄａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅＹｅｌｌｏｗＣａｔ⁃ｆｉｓｈＰｅｌｔｅｏｂａｇｒｕｓｆｕｌｖｉｄｒａｃｏ［Ｊ］．ＡｑｕａｃｕｌｔｕｒｅＲｅ⁃

ｓｅａｒｃｈ，２０１７，４８（１）：２１４－２２２．

［３６］　ＪＡＲＭＯＬＯＷＩＣＺＩｍｍｕｎｏｍｏｄｕｌａｔｏｒｙＳ，ｅｆｆｅｃｔＺＡＫＥｏｆＳ

′Ｚ，ＳＩＷＩＣＫＩＡ，ｅｔａｌ．ｄｉｅｔａｒｙｂｒｅｗｅｒ’ｓｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｉｎＳａｎｄｅｒｌｕｃｉｏｐｅｒｃａｊｕｖｅｎｉｌｅｓａｇａｉｎｓｔｔｈｅｃｈａｌ⁃ｌｅｎｇｅｏｆＡｅｒｏｍｏｎａｓｓａｌｍｏｎｉｃｉｄａ［Ｊ］．ＡｑｕａｃｕｌｔｕｒｅＩｎ⁃ｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，２０１３，２１（４）：９３９－９４５．

［３７］　ＢＩＳＷＡＳＣｙｔｏｋｉｎｅＧｒｅｓｐｏｎｓｅｓ，ＫＯＲＥＮＡＧＡｉｎｔｈｅＨｃｏｍｍｏｎ，ＴＡＫＡＹＡＭＡｃａｒｐ，ＣｙｐｒｉｎｕｓＨ，ｅｔａｌ．

ｃａｒｐｉｏＬ．ｔｒｅａｔｅｄｗｉｔｈｂａｋｅｒ’ｓｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ［Ｊ］．Ａｑｕａ⁃ｃｕｌｔｕｒｅ，２０１２，３５６／３５７：１６９－１７５．

［３８］　黄旭雄对凡纳滨对虾免疫相关基因表达及抗菌机能的影

，罗词兴，危立坤，等．饲料中添加酵母提取物

［［［［［［［［［［［　

３４４

动　物　营　养　学　报

响［Ｊ］．水产学报，２０１４，３８（１２）：２０４９－２０５８．

３２卷

［３９］　ＹＡＮＧＳ，ＹＡＮＴ，ＷＵＨ，ｅｔａｌ．Ａｃｕｔｅｈｙｐｏｘｉｃｓｔｒｅｓｓ：

ｅｆｆｅｃｔｏｎｂｌｏｏｄｐａｒａｍｅｔｅｒｓ，ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｅｎｚｙｍｅｓ，ａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＨＩＦ⁃１ａｌｐｈａａｎｄＧＬＵＴ⁃１ｇｅｎｅｓｉｎＬａｒｇｅｍｏｕｔｈｂａｓｓ（Ｍｉｃｒｏｐｔｅｒｕｓｓａｌｍｏｉｄｅｓ）［Ｊ］．Ｆｉｓｈ＆

［４０］　ＰＯＬＬＯＣＫＭＳ，ＣＬＡＲＫＥＬＭＪ，ＤＵＢＥＭＧ．Ｔｈｅ

ＳｈｅｌｌｆｉｓｈＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，２０１７，６７：４４９－４５８．

［４２］　ＹＡＮＧＫ，ＦＡＮＱＸ，ＺＨＡＮＧＬ，ｅｔａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｏｆｄｉｓ⁃

ｓｏｌｖｅｄｏｘｙｇｅｎｌｅｖｅｌｓｏｎｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ｅｎｅｒｇｙｂｕｄｇｅｔａｎｄａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｏｆｙｅｌｌｏｗｃａｔｆｉｓｈ，Ｐｅｌｔｅｏｂａｇｒｕｓｆｕｌｖｉｄｒａｃｏ（Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ）［Ｊ］．Ａｑｕａｃｕｌ⁃ｔｕｒｅＲｅｓｅａｒｃｈ，２０１５，４６（８）：２０２５－２０３３．

［４３］　ＦＥＮＧＪＦ，ＧＵＯＹ，ＧＡＯＹＦ，ｅｔａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｈｙｐｏｘ⁃

ｉａｏｎｔｈｅｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙｏｆｚｅｂｒａｆｉｓｈ（Ｄａｎｉｏｒｅｒｉｏ）：ｉｎｉ⁃ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｈｙｐｏｘｉａｏｎｆｉｓｈｅｓ：ｆｒｏｍｅｃｏｌｏｇｉｃａｌｒｅｌｅｖａｎｃｅｔｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌｅｆｆｅｃｔｓ［Ｊ］．ＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＲｅｖｉｅｗｓ，

２００７，１５（ＮＡ）：１－１４．

４１］　ＬＵＳＨＣＨＡＫＣＨＡＫＯＶ，ｅｔＶａｌ．Ｉ，ＨｙｐｏｘｉａＢＡＧＮＹＵＫＯＶＡａｎｄｒｅｃｏｖｅｒｙＴｐｅｒｔｕｒｂＶ，ＬＵＳＨ⁃

ｆｒｅｅｒａｄｉｃａｌｐｒｏｃｅｓｓｅｓａｎｄａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｐｏｔｅｎｔｉａｌｉｎｃｏｍｍｏｎｃａｒｐ（Ｃｙｐｒｉｎｕｓｃａｒｐｉｏ）ｔｉｓｓｕｅｓ［Ｊ］．ＴｈｅＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ＆ＣｅｌｌＢｉｏｌｏｇｙ，２００５，３７（６）：

１３１９－１３３０．

ｔｉａｌｒｅｓｐｏｎｓｅｓ，ａｃｃｌｉｍａｔｉｏｎａｎｄｒｅｃｏｖｅｒｙ［Ｊ］．ＢｕｌｌｅｔｉｎｏｆＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＣｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎａｎｄＴｏｘｉｃｏｌｏｇｙ，２０１５，

９６（１）：４３－４８．

［４４］　张立颖研究进，展赵萌［Ｊ］，．王跃智江西农．水生生物超氧化物岐化酶的业大学学报，２０１２，３４（４）：

８００－８０４．［４５］　ＢＵＥＧＥｔｉｏｎ［Ｊ］．ＭｅｔｈｏｄｓＪＡ，ＡＵＳＴｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙＳＤ．Ｍｉｃｒｏｓｏｍａｌ，１９７８，ｌｉｐｉｄ５２：３０２ｐｅｒｏｘｉｄａ⁃

－３１０．［１期彭　凯等：饲料中添加啤酒酵母提取物对花鲈幼鱼生长性能、抗氧化和抗低氧胁迫能力的影响３４５

ＥｆｆｅｃｔｓｏｆＤｉｅｔａｒｙＢｒｅｗｅｒｓ’ＹｅａｓｔＥｘｔｒａｃｔｏｎＧｒｏｗｔｈＰｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，

ＡｎｔｉｏｘｉｄａｎｔａｎｄＡｎｔｉ⁃ＨｙｐｏｘｉｃＳｔｒｅｓｓＡｂｉｌｉｔｙｏｆＪｕｖｅｎｉｌｅ

ＪａｐａｎｅｓｅＳｅｅｂａｓｓ（Ｌａｔｅｏｌａｂｒａｘｊａｐｏｎｉｃｕｓ）

∗

ＰＥＮＧＫａｉ１，２，３　ＳＵＮＹｕｐｉｎｇ１，２，３∗　ＷＡＮＧＧｕｏｘｉａ１，２，３　ＨＵＡＮＧＹａｎｈｕａ１，２，３，４∗　

（１．ＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，ＧｕａｎｇｄｏｎｇＡｃａｄｅｍｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ，Ｇｕａｎｇｚｈｏｕ５１０６４０，Ｃｈｉｎａ；２．Ｇｕａｎｇｄｏｎｇ

ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＡｎｉｍａｌＢｒｅｅｄｉｎｇａｎｄＮｕｔｒｉｔｉｏｎ，Ｇｕａｎｇｚｈｏｕ５１０６４０，Ｃｈｉｎａ；３．ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆ

ＡｎｉｍａｌＮｕｔｒｉｔｉｏｎａｎｄＦｅｅｄＳｃｉｅｎｃｅ（ＳｏｕｔｈＣｈｉｎａ）ｏｆＭｉｎｉｓｔｒｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，

Ｇｕａｎｇｚｈｏｕ５１０６４０，Ｃｈｉｎａ；４．ＧｕａｎｇｚｈｏｕＦｉｓｈｔｅｃｈＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ

Ｃｏ．，Ｌｔｄ．，Ｇｕａｎｇｚｈｏｕ５１０６４０，Ｃｈｉｎａ）

ＭＯＷｅｎｙａｎ１，２，３　ＸＩＡＯＨｏｎｇｆａ１，２，３

Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ａ５６⁃ｄａｙｆｅｅｄｉｎｇｔｒａｉｌｗａｓｃｏｎｄｕｃｔｅｄｔｏｅｖａｌｕａｔｅｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｅｔａｒｙｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｏｎｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔａｎｄａｎｔｉ⁃ｈｙｐｏｘｉｃｓｔｒｅｓｓａｂｉｌｉｔｙｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅＪａｐａｎｅｓｅｓｅｅｂａｓｓ（Ｌａｔｅｏｌａｂｒａｘｊａ⁃ｐｏｎｉｃｕｓ）．Ａｔｏｔａｌｏｆ５２５ｊｕｖｅｎｉｌｅＪａｐａｎｅｓｅｓｅｅｂａｓｓｗｉｔｈａｎｉｎｉｔｉａｌｂｏｄｙｗｅｉｇｈｔｏｆ（１０．１４±０．１２）ｇｗｅｒｅｄｉｖｉｄｅｄｉｎｔｏ５ｇｒｏｕｐｓｗｉｔｈ３ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓｉｎｅａｃｈｇｒｏｕｐａｎｄ３５ｆｉｓｈｉｎｅａｃｈｒｅｐｌｉｃａｔｅ．Ｆｉｖｅｉｓｏｐｒｏｔｅｉｃａｎｄｉｓｏｌｉｐｉｄｉｃｄｉｅｔｓｗｅｒｅｆｏｒｍｕｌａｔｅｄｂｙａｄｄｉｎｇ２８％ｏｆｆｉｓｈｍｅａｌｗｉｔｈｏｕｔｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ（Ｔ１），ａｎｄ２５％ｏｆｆｉｓｈｍｅａｌｗｉｔｈ０（Ｔ２），０．１％（Ｔ３），０．２％（Ｔ４）ａｎｄ０．３％（Ｔ５）ｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ．Ｒｅｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄａｓｆｏｌｌｏｗｓ：１）ｔｈｅｆｅｅｄｉｎｔａｋｅｏｆｆｉｓｈｉｎＴ２ｇｒｏｕｐｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｌｏｗｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ１ｇｒｏｕｐ，ｂｕｔｗａｓｓｉｍｉｌａｒｗｉｔｈＴ３ｔｏＴ５ｇｒｏｕｐｓ（Ｐ＞０．０５）．ＦｉｎａｌｂｏｄｙｗｅｉｇｈｔｉｎＴ２ｇｒｏｕｐｗａｓｌｏｗｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ１ａｎｄＴ３ｔｏＴ５ｇｒｏｕｐｓ（０．０５＜Ｐ＜０．１０）．Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓｄｉｄｎｏｔａｌｔｅｒｔｈｅｐｈｙｓｉｃａｌｉｎｄｉｃｅｓａｎｄｗｈｏｌｅｂｏｄｙｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ（Ｐ＞０．０５）．２）Ｔｈｅｓｅｒｕｍｂｉ⁃ｏｃｈｅｍｉｃａｌｉｎｄｉｃｅｓｈａｄｎｏｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅａｍｏｎｇｇｒｏｕｐｓ（Ｐ＞０．０５）．Ｔｈｅｓｅｒｕｍｃａｔａｌａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｉｎ⁃ｃｒｅａｓｅｄ，ｗｈｅｒｅａｓｓｅｒｕｍｍａｌｏｎｄｉａｌｄｅｈｙｄｅａｎｄｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ⁃６ｃｏｎｔｅｎｔｓｄｅｃｒｅａｓｅｄｗｉｔｈｔｈｅｉｎｃｒｅａｓｅｏｆｄｉｅｔａｒｙｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ．ＳｅｒｕｍｃａｔａｌａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｉｎＴ５ｇｒｏｕｐｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ２ｇｒｏｕｐ（Ｐ＜０．０５），ａｎｄｓｅｒｕｍｍａｌｏｎｄｉａｌｄｅｈｙｄｅａｎｄｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ⁃６ｃｏｎｔｅｎｔｓｉｎＴ３ｔｏＴ５ｇｒｏｕｐｓｗｅｒｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｌｏｗｅｒｔｈａｎｔｈｏｓｅｉｎＴ２ｇｒｏｕｐ（Ｐ＜０．０５）．Ｓｉｍｉｌａｒｌｙ，ｔｈｅｈｅｐａｔｉｃｔｏｔａｌａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｃａｐａｃｉｔｙａｎｄｃａｔａｌａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｉｎｃｒｅａｓｅｄｗｉｔｈｔｈｅｉｎｃｒｅａｓｅｏｆｄｉｅｔａｒｙｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ．ＴｈｅｈｅｐａｔｉｃｔｏｔａｌａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｃａｐａｃｉｔｙｉｎＴ４ａｎｄＴ５ｇｒｏｕｐｓｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ１ｔｏＴ３ｇｒｏｕｐｓ（Ｐ＜０．０５）．ＴｈｅｈｅｐａｔｉｃｃａｔａｌａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｉｎＴ３ｔｏＴ５ｇｒｏｕｐｓｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ１ｇｒｏｕｐ（Ｐ＜０．０５）．３）Ａｆｔｅｒ６ｈｏｆｈｙｐｏｘｉｃｓｔｒｅｓｓ，ｔｈｅｃｕｍｕｌａ⁃ｔｉｖｅｍｏｒｔａｌｉｔｙｒａｔｅｉｎＴ３ｔｏＴ５ｇｒｏｕｐｓｗｅｒｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｌｏｗｅｒｔｈａｎｔｈｏｓｅｉｎＴ２ｇｒｏｕｐ（Ｐ＜０．０５），ｓｅｒｕｍｃａｔａ⁃ｌａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｉｎＴ４ａｎｄＴ５ｇｒｏｕｐｓｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ１ｔｏＴ３ｇｒｏｕｐｓ（Ｐ＜０．０５），ａｎｄｓｅｒｕｍｍａｌｏｎｄｉａｌｄｅｈｙｄｅｃｏｎｔｅｎｔｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｌｏｗｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ１ａｎｄＴ２ｇｒｏｕｐｓ（Ｐ＜０．０５）．Ｍｏｒｅｏｖｅｒ，Ｔ１ａｎｄＴ２ｇｒｏｕｐｓｈａｄｌｏｗｅｒｈｅｐａｔｉｃｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅｄｉａｍｕｔａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｔｈａｎＴ４ａｎｄＴ５ｇｒｏｕｐｓ（Ｐ＜０．０５），ａｎｄｈｅｐａｔｉｃｍａ⁃ｌｏｎｄｉａｌｄｅｈｙｄｅｃｏｎｔｅｎｔｉｎＴ３ｔｏＴ５ｇｒｏｕｐｓｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｌｏｗｅｒｔｈａｎｔｈａｔｉｎＴ１ａｎｄＴ２ｇｒｏｕｐｓ（Ｐ＜０．０５）．Ｉｎｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ，ａｄｄｉｎｇ０．１％ｔｏ０．３％ｏｆｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔｉｍｐｒｏｖｅｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｓｔａｔｕｓ，ａｎｄａｎｔｉ⁃ｈｙｐｏｘｉｃｓｔｒｅｓｓａｂｉｌｉｔｙｏｆｊｕｖｅｎｉｌｅＪａｐａｎｅｓｅｓｅｅｂａｓｓ．［ＣｈｉｎｅｓｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉｍａｌＮｕｔｒｉｔｉｏｎ，２０２０，３２（１）：３３４⁃３４５］

Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：ｂｒｅｗｅｒｓ’ｙｅａｓｔｅｘｔｒａｃｔ；Ｊａｐａｎｅｓｅｓｅｅｂａｓｓ；ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ；ｈｙｐｏｘｉｃｓｔｒｅｓｓ

∗Ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｄｅｑｕａｌｌｙ

∗∗Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇａｕｔｈｏｒ，ｐｒｏｆｅｓｓｏｒ，Ｅ⁃ｍａｉｌ：ｈｕａｎｇｙｈ１１１＠１２６．ｃｏｍ

（责任编辑　陈　鑫）